Evaluación en campo de un ELISA indirecto, desarrollado con productos antigénicos especie-específicos de Trypanosoma vivax para el diagnóstico de la tripanosomosis bovina. Fases: I-Preparación y rendimiento de los antígenos, y II-Validación del Ac-ELISA homólogo
Resumen
INTRODUCCION
Métodos serológicos como el ensayo inmunoenzimático indirecto con antígenos derivados de T. evansi (T.evansi-Ac-ELISA) y la inmunofluorescencia indirecta (IFI), parecieran ser los métodos que han proporcionado los mejores resultados para la determinación de tripanosomosis bovina. Sin embargo, sus principales deficiencias son no poder discriminar entre infecciones recientes y pasadas, y, en cuanto a la T.evansi-Ac-ELISA, no diferenciar entre reacciones cruzadas con otros patógenos con los que T. vivax comparte similitud antigénica como T.evansi y T. theileri (Desquesnes, 1997; Morlais, Ravel, Grébaut, Dumas, & Cuny, 2001). Se ha utilizado la compatibilidad genética con T. evansi para justificar el uso de antígeno de este parásito en la elaboración de la Ac-ELISA, para el diagnóstico de T. vivax (Uzcanga, Mendoza, Aso, & Bubis, 2002), esto genera inconvenientes en zonas donde la tripanosomosis por T. evansi también sea endémica, y atribuir reacciones positivas observadas a la presencia de T. evansi en bovinos con ausencia de T. vivax, condición que fuera reportada por Toro, López, León, Ruiz, García et al. (1980).
El presente trabajo, realizado entre 2013 y 2015, tuvo como propósito la obtención de una base de datos actualizados sobre la caracterización epidemiológica de la tripanosomosis bovina con el soporte diagnóstico de un estuche de ELISA indirecto, elaborado por el Laboratorio de Biotecnología, Investigación y Prestación de Servicios en Sanidad Animal (LABIPRESAN) de la Universidad Nacional Experimental de los Llanos Centrales Rómulo Gallegos (UNERG), con procesos innovadores de producción de antígenos autóctonos especie-específicos de T. vivax, y subsanar así las principales deficiencias de los antígenos heterólogos de T. evansi, específicamente, no diferenciar entre reacciones cruzadas con otros patógenos con los que T. vivax comparte similitud antigénica como T. evansi y T. theileri (Desquesnes 1997; Morlais et al., 2001; Osório, Madruga, Desquesnes, Soares, Ribeiro et al., 2008).Descargas
Los datos de descargas todavía no están disponibles.
Métricas
Cargando métricas ...
Citas
Agudo, L., Tamasaukas, R., Silva, A., Sánchez, J., Ron, J., Fernández, M., Florio, F., Vintimilla, M., Colmenares, O., Rivera, S. (2009). Tipo bovino trypanotolerante y trypanosusceptible doble propósito en la región de los llanos Centrales de Venezuela. I: Identificación y caracterización fenotípica. Revista Electrónica de Veterinaria, 10(10), 1-23.
Alfaro, C, García, F, Toro, M, Valle, A. (1994). Prevalencia de anaplasmosis bovina de acuerdo a factores intrínsecos del hospedador en bovinos del estado Monagas. En: Memorias VIII Congreso Venezolano de Zootecnia. San Juan de Los Morros, Venezuela. Sp.
Bolívar, A, García, P, Crisante, G, Rojas, A, Teixeira, M, Añez, N. (2006). Detección de infecciones subclínicas por Trypanosoma vivax en bovinos de fincas ganaderas de Mérida, Venezuela. Nota Científica. Boletín de Malariología y Salud Ambiental, 46(1), 199-212.
Bolívar, A. M. (2013). Detección de Anaplasma marginale y Trypanosoma vivax en garrapatas de ganado bovino empleando la reacción en cadena de la polimerasa. Revista Electrónica de Veterinaria, 14(3), 1-10.
Cortez, A. P., Ventura, R. M., Rodrigues, A. C., Batista, J. S., Paiva, F., Añez, N., Machado, R. Z., Gibson, W. C., Teixeira, M. M. G. (2006). The taxonomic and phylogenetic relationships of Trypanosoma vivax from South America and Africa. Parasitology, 133(2), 159-169.
Desquesnes, M. (1997). Evaluation of simple PCR technique for the diagnosis of Trypanosoma vivax infection in the serum of cattle in comparison to parasitological techniques and antigen-enzyme-linked immunosorbent assay. Acta Tropica, 65, 139-148.
García, F., Alfaro, C., Reyna, A., Coronel, R., Rangel, A. (2008). Caracterización de un brote de Tripanosomosis en un rebaño bovino de ceba del estado Monagas. Revista Científica FCV- LUZ, 18(Suplemento 1), 503.
Jacobson, R. H. (1998). Validation of serological assays for diagnosis of infectious diseases. Revue Scientifique et Technique (International Office of Epizootics), 17, 469-486.
Lumsden, W. H. R. (1977). Problems in characterization and nomenclature of trypanosome populations. Annales De La Societe Belge De Medecine Tropicale, 57(4-5), 361-368.
Morlais, I, Ravel, S, Grébaut, P, Dumas, V, Cuny, G. (2001). New molecular marker for Trypanosoma (Duttonella) vivax identification. Acta Tropica, 80(3), 207-13.
Osório, A. L., Madruga, C. R., Desquesnes, M., Soares, C. O., Ribeiro, L. R., Costa, S. C. (2008). Trypanosoma (Duttonella) vivax: its biology, epidemiology, pathogenesis, and introduction in the New World - a review. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz, 103(1), 1-13.
Paris, J., Murray, M., Moodimba, M. C. (1982). A comparative evaluation of parasitological techniques currently available for the diagnosis of african trypanosomiasis. Acta Tropica, 38, 307-316.
Rey, C. (2004). Hemoparasitosis en América Latina: El Caso Venezuela. Red Electrónica de Garrapatas y Enfermedades Transmitidas por Garrapatas para América Latina y el Caribe, RedEctopar, 1-5.
Tamasaukas, R. (1995). Estudio General de la Trypanosomiasis Bovina. Trabajo de Ascenso (Categoria Titular), 342 pp. Universidad Nacional Experimental Rómulo Gallegos, San Juan de los Morros, Estado Guárico, Venezuela.
Tamasaukas, R., Roa, N., Aguirre, A,, Ron, J., Cobo, M. (2000). Tetralogía hemoparasitaria en algunas fincas bovinas del municipio Santa Rita, estado Guárico, Venezuela. Revista de la Facultad de Ciencias Veterinarias de la Universidad Central de Venezuela, 8(4), 101-108.
Tamasaukas, R., Agudo-Castellanos, L., Silva-Ravelo, A., Florio-Luis, J., Vintimilla-Tamasaukas, M., Rivera-Pirela, S. (2010). Hemoparasitosis en ganadería doble propósito venezolana, diagnóstico y control: una revisión. Agronomía Mesoamericana, 21(2), 367-381.
Tijssen, P. (1993). Practice and theory of enzymeimmunoassays. Series Laboratory techniques in biochemistry and molecular biology. No. 15. Amsterdam: Elsevier Science, 576 pp.
Toro, M., López, R., León, E., Ruiz, A., García, J. (1980). Resultados de un muestreo serológico sobre bovinos portadores de Babesia, mediante inmunofluorescencia indirecta. Veterinaria Tropical, 5(1), 3-8.
Uzcanga, G., Mendoza, M., Aso, P., Bubis, J. (2002). Purification of a 64Kda antigen from Trypanosoma evansi that exhibts cross-reactivity with Trypanosoma vivax. Parasitology, 124, 287-299.
Alfaro, C, García, F, Toro, M, Valle, A. (1994). Prevalencia de anaplasmosis bovina de acuerdo a factores intrínsecos del hospedador en bovinos del estado Monagas. En: Memorias VIII Congreso Venezolano de Zootecnia. San Juan de Los Morros, Venezuela. Sp.
Bolívar, A, García, P, Crisante, G, Rojas, A, Teixeira, M, Añez, N. (2006). Detección de infecciones subclínicas por Trypanosoma vivax en bovinos de fincas ganaderas de Mérida, Venezuela. Nota Científica. Boletín de Malariología y Salud Ambiental, 46(1), 199-212.
Bolívar, A. M. (2013). Detección de Anaplasma marginale y Trypanosoma vivax en garrapatas de ganado bovino empleando la reacción en cadena de la polimerasa. Revista Electrónica de Veterinaria, 14(3), 1-10.
Cortez, A. P., Ventura, R. M., Rodrigues, A. C., Batista, J. S., Paiva, F., Añez, N., Machado, R. Z., Gibson, W. C., Teixeira, M. M. G. (2006). The taxonomic and phylogenetic relationships of Trypanosoma vivax from South America and Africa. Parasitology, 133(2), 159-169.
Desquesnes, M. (1997). Evaluation of simple PCR technique for the diagnosis of Trypanosoma vivax infection in the serum of cattle in comparison to parasitological techniques and antigen-enzyme-linked immunosorbent assay. Acta Tropica, 65, 139-148.
García, F., Alfaro, C., Reyna, A., Coronel, R., Rangel, A. (2008). Caracterización de un brote de Tripanosomosis en un rebaño bovino de ceba del estado Monagas. Revista Científica FCV- LUZ, 18(Suplemento 1), 503.
Jacobson, R. H. (1998). Validation of serological assays for diagnosis of infectious diseases. Revue Scientifique et Technique (International Office of Epizootics), 17, 469-486.
Lumsden, W. H. R. (1977). Problems in characterization and nomenclature of trypanosome populations. Annales De La Societe Belge De Medecine Tropicale, 57(4-5), 361-368.
Morlais, I, Ravel, S, Grébaut, P, Dumas, V, Cuny, G. (2001). New molecular marker for Trypanosoma (Duttonella) vivax identification. Acta Tropica, 80(3), 207-13.
Osório, A. L., Madruga, C. R., Desquesnes, M., Soares, C. O., Ribeiro, L. R., Costa, S. C. (2008). Trypanosoma (Duttonella) vivax: its biology, epidemiology, pathogenesis, and introduction in the New World - a review. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz, 103(1), 1-13.
Paris, J., Murray, M., Moodimba, M. C. (1982). A comparative evaluation of parasitological techniques currently available for the diagnosis of african trypanosomiasis. Acta Tropica, 38, 307-316.
Rey, C. (2004). Hemoparasitosis en América Latina: El Caso Venezuela. Red Electrónica de Garrapatas y Enfermedades Transmitidas por Garrapatas para América Latina y el Caribe, RedEctopar, 1-5.
Tamasaukas, R. (1995). Estudio General de la Trypanosomiasis Bovina. Trabajo de Ascenso (Categoria Titular), 342 pp. Universidad Nacional Experimental Rómulo Gallegos, San Juan de los Morros, Estado Guárico, Venezuela.
Tamasaukas, R., Roa, N., Aguirre, A,, Ron, J., Cobo, M. (2000). Tetralogía hemoparasitaria en algunas fincas bovinas del municipio Santa Rita, estado Guárico, Venezuela. Revista de la Facultad de Ciencias Veterinarias de la Universidad Central de Venezuela, 8(4), 101-108.
Tamasaukas, R., Agudo-Castellanos, L., Silva-Ravelo, A., Florio-Luis, J., Vintimilla-Tamasaukas, M., Rivera-Pirela, S. (2010). Hemoparasitosis en ganadería doble propósito venezolana, diagnóstico y control: una revisión. Agronomía Mesoamericana, 21(2), 367-381.
Tijssen, P. (1993). Practice and theory of enzymeimmunoassays. Series Laboratory techniques in biochemistry and molecular biology. No. 15. Amsterdam: Elsevier Science, 576 pp.
Toro, M., López, R., León, E., Ruiz, A., García, J. (1980). Resultados de un muestreo serológico sobre bovinos portadores de Babesia, mediante inmunofluorescencia indirecta. Veterinaria Tropical, 5(1), 3-8.
Uzcanga, G., Mendoza, M., Aso, P., Bubis, J. (2002). Purification of a 64Kda antigen from Trypanosoma evansi that exhibts cross-reactivity with Trypanosoma vivax. Parasitology, 124, 287-299.
Descargas
Publicado
2017-12-01
Cómo citar
Tamasaukas, R., Tamasauskas, C., Cobo, M., & Rivera, S. (2017). Evaluación en campo de un ELISA indirecto, desarrollado con productos antigénicos especie-específicos de Trypanosoma vivax para el diagnóstico de la tripanosomosis bovina. Fases: I-Preparación y rendimiento de los antígenos, y II-Validación del Ac-ELISA homólogo. Maskana, 8, 29–35. Recuperado a partir de https://publicaciones.ucuenca.edu.ec/ojs/index.php/maskana/article/view/1481
Número
Sección
Resúmenes en Extenso
Licencia
Copyright © Autors. Creative Commons Attribution 4.0 License para cualquier artículo enviado a partir del 6 de junio de 2017. Para los manuscritos presentados anteriormente, se utilizó la licencia CC BY 3.0.
Usted es libre de:
 |
Compartir — compartir y redistribuir el material publicado en cualquier medio o formato. |
 |
Adaptar — combinar, transformar y construir sobre el material para cualquier propósito, incluso comercialmente. |
Bajo las siguientes condiciones:
 |
Atribución — Debe otorgar el crédito correspondiente, proporcionar un enlace a la licencia e indicar si se realizaron cambios. Puede hacerlo de cualquier manera razonable, pero de ninguna manera que sugiera que el licenciador lo respalda a usted o a su uso. |
| Sin restricciones adicionales: no puede aplicar términos legales o medidas tecnológicas que restrinjan legalmente a otros a hacer cualquier cosa que permita la licencia. |
Mayor información sobre este acuerdo de autoría y licencia, transferencia de derechos o solicitudes de reproducción, pueden ser consultados en este enlace.
