Evaluación de los sistemas de cultivo semisólido y BIT en la multiplicación in vitro de Juglans neotrópica

Autores/as

  • Mélida N. Rocano C. Universidad de Cuenca
  • Paulina G. Villena O. Universidad de Cuenca
  • Denisse F. Peña T. Universidad de Cuenca

DOI:

https://doi.org/10.18537/mskn.08.01.09

Palabras clave:

juglans neotrópica, bioreactores de inmersión temporal, nogal

Resumen

El propósito de este estudio fue evaluar el efecto de dos sistemas de cultivo, semisólido e inmersión temporal en biorreactor (BIT), para la multiplicación in vitro de Juglans neotrópica, a partir de embriones cigóticos. En el sistema BIT se analizó también el efecto de la frecuencia de inmersión y la ventilación artificial. El desarrollo de los brotes obtenidos fue evaluado sobre las siguientes características: número y tamaño de los brotes, número de hojas, peso fresco y seco. No se encontraron diferencias estadísticamente significativas. En general, el sistema de inmersión BIT produjo un número de brotes equivalente, con características similares a los obtenidos en el método convencional en medio semisólido. Sin embargo, los BITs produjeron más brotes, la ventilación forzada redujo el número de brotes hiperhídricos y el sistema BIT fue considerablemente más barato, con un costo medio de producción de $0.21 por planta versus $0.40 en el método de propagación en cultivo semisólido.

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Biografía del autor/a

Mélida N. Rocano C., Universidad de Cuenca

Estudiante de posgrado de la Carrera de Ingeniería Agronómica, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad de Cuenca.

Paulina G. Villena O., Universidad de Cuenca

Docente de la Carrera de Ingeniería Agronómica, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad de Cuenca

Denisse F. Peña T., Universidad de Cuenca

Docente de la Carrera de Ingeniería Agronómica, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad de Cuenca

Citas

Alvard D, Cote FD, Teisson C (1993). Comparison of methods of liquid medium cultures for banana micropropagation. Effect of temporary immersion of explants. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 32:55-60

Alvarenga Venutolo S (2015). Micropropagación masiva de Stevia rebaudiana Bertoni en sistemas de inmersión temporal. Cultivos Tropicales 36(3):50-57

Amiri M, Gharati S (2012). Influence of medium composition on multiplication of walnut (Juglans regia L.) growth. Journal of Medicinal Plants Research 6(8):1482-1485

Bosela M, Michler C (2008). Media effects on black walnut (Juglans nigra L.) shoot culture growth in vitro: evaluation of multiple nutrient formulations and cytokinin types. In Vitro Cellular and Devevelopmental Biology - Plant 44:316-329

Castro D, González J (2002). Eucalyptus (Eucalyptus grandis Hill ex Maiden) micropropagation in a temporary immersion system. Agricultura Técnica 62(1):68-78

De Feria Silva M, Chávez Milián M, Quiala Mendoza E, Jiménez González E (2003). Efecto de la densidad de inóculo y la frecuencia de inmersión en la propagación in vitro de Psidium guajava cv. Enana roja en sistemas de inmersión temporal. Biotecnología Vegetal 3(3):149-154

Driver J, Kuniyuki A (1984). In vitro propagation of Paradox Walnut rootstock. HortScience 18(4):506-509

Ducos JP, Lambot C, Pétiard V (2007). Bioreactors for coffee mass prop- agation by somatic embryogenesis. International Journal of Developmental Biology 1(1):1-12

Escalona M, Aragon CA, Capote I, Pina D, Ceja I, Rodríguez R, Debergh P (2007). Physiology of effects of temporary immersion bioreactor (TIB) on micropropagated plantlets. Acta horticulturae 748(748):95-101

Escalona M, Lorenzo JC, González B, Daquinta M, González JL, Desjardins Y, Borroto CG (1999). Pineapple (Ananas comosus L. Merr) micropropagation in temporary immersion systems. Plant Cell Reports 18:743-751

Georgiev V, Schumann A, Pavlov A, Bley T (2014). Review temporary immersion systems in plant biotechnology. Engineering Life Sciences 14(6):607-621

Herrera Herrera C. (2016) Evaluación de fuentes semilleras de especies forestales nativa, como apoyo a programas y políticas de reforestación de laprovincia de Loja. En: Herrera Herrera C (Ed.)., Evaluación de fuentes semilleras de especies forestales nativa, como apoyo a programas y políticas de reforestación de laprovincia de Loja (pág. 95). Loja, Ecuador

Long L, Preece J, Van Sambeek J (1995). Adventitious regeneration of Juglans nigra L. (eastern black walnut). Plant Cell Reports 14(12):799-803

López Carvajal J, Piedrahita Cardona E (1998). Respuesta de la semilla de Cedro Negro (Juglans Neotropica Diels) a la aplicación de tratamientos pregerminativos. Revista Facultad Nacional de Agronomía, 51(1):217-235

Payghamzadeh K, Sayyed KK (2011). In vitro propagation of walnut - A review. African Journal of Biotechnology 10(3):290-311

Peña TD, Rocano CM, Salazar OJ, Torres C (2014). Inducción de la brotación in vitro de microplántulas de Nogal (Juglans neotropica) tratadas con Thidiazuron (TDZ) y 6-Bencilaminnopurina (BAP). MASKANA 5(2):81-85

Perrugoria M (2012). Desarrololo de una técnica para micropropagación de especies leñosas en biorreactores. Tesis de maestría, Facultad de Ciencias, Universidad de la República (Uruguay)

Quintero García O, Jaramillo Villegas S (2012). Rescate y germinación in vitro de embriones inmaduros de cedro negro (Juglans neotropica Diels). Acta Agronómica 61(1):52-60

Ramírez-Mosqueda MA, Iglesias-Andreu LG (2016). Evaluation of different temporary immersion systems (BIT®, BIG, and RITA®) in the micropropagation of Vanilla planifolia Jacks. In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant 52(2):154-160

Robert ML, Herrera-Herrera JL, Herrera-Herrera G, Herrera-Alamillo MA, Fuentes-Carrillo PA (2006). New temporary immersion bioreactor system for micropropagation. pp. 121-129. In: Loyola-Vargas VM, Vazquez-Flota F. (Eds.). Plant cell culture protocols (2nd ed.), Vol. 11. Totowa, NL: Humana Press

Rojas Rodríguez F, Torres Córdova G (2008). Árboles del Valle Central de Costa Rica: reproducción. Kurú: Revista Forestal (Costa Rica) 6(17):1-3

Ross S, Castillo A (2010). Micropropagación de Achyrocline flaccida (Weinm.) DC. en medios de cultivo líquidos. Agrociencia XIV(1):1-71

Sánchez Zamora M, Cos Terrer J, Frutos Tomás D, García López R (2006). Embryo germination and proliferation in vitro of Juglans regia L. Scientia Horticulturae 108(3):317-321

Toosi S, Dilmagani K (2010). Proliferation of Juglans regia L. by in vitro embryo. Journal of Cell Biology and Genetics 1(1):12-19

Watt P (2012). The status of temporary immersion system (TIS) technology for plant micropropagation. African Journal of Biotechnology 11(76):1-11

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Publicado

2017-06-20

Cómo citar

Rocano C., M. N., Villena O., P. G., & Peña T., D. F. (2017). Evaluación de los sistemas de cultivo semisólido y BIT en la multiplicación in vitro de Juglans neotrópica. Maskana, 8(1), 103–109. https://doi.org/10.18537/mskn.08.01.09

Número

Sección

Artículos científicos

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